frontier-banner
前沿速递
首页>前沿速递>

Journal of thoracic oncology : official publication of the International Association for the Study of Lung Cancer | c-MET 双特异性抗体amivantamab通过EGFR和MET共激活介导间皮瘤免疫细胞毒性

Journal of thoracic oncology : official publication of the International Association for the Study of Lung Cancer | c-MET 双特异性抗体amivantamab通过EGFR和MET共激活介导间皮瘤免疫细胞毒性
--

小赛推荐:

该研究揭示了间皮瘤中EGFR和MET共表达的普遍性及其对amivantamab敏感性的预测价值,为开发靶向c-MET和EGFR的免疫治疗策略提供了直接实验依据,尤其适用于上皮样亚型等免疫检查点抑制剂响应不佳的患者群体。

 

文献概述

本文《Amivantamab induces immune-mediated cytotoxicity in mesothelioma via EGFR and MET engagement》,发表于《Journal of thoracic oncology : official publication of the International Association for the Study of Lung Cancer》杂志,系统探讨了双特异性抗体amivantamab在弥漫性胸膜间皮瘤(DPM)中的抗肿瘤机制。研究整合了转录组、单细胞RNA测序、免疫组化及体外与体内功能实验,揭示amivantamab通过同时结合EGFR和c-MET,激活自然杀伤(NK)细胞介导的抗体依赖性细胞介导的细胞毒性(ADCC),从而实现显著的肿瘤抑制。该研究为间皮瘤这一缺乏有效靶向疗法的致死性肿瘤提供了新的治疗策略。

背景知识

弥漫性胸膜间皮瘤(DPM)是一种高度侵袭性且治疗选择极为有限的恶性肿瘤,尽管免疫检查点抑制剂已改善部分患者生存,但上皮样亚型(最常见)对现有免疫治疗响应率低,且缺乏有效的靶向治疗手段。目前针对EGFR和c-MET的酪氨酸激酶抑制剂在间皮瘤中单药或联合应用疗效不佳,可能与信号通路冗余及缺乏免疫参与有关。本研究的切入点在于利用双特异性抗体amivantamab同时靶向EGFR和c-MET,不仅阻断下游致癌信号,更通过其IgG1 Fc结构域招募免疫效应细胞,从而克服传统靶向治疗的局限。此外,研究通过单细胞RNA-seq明确靶点在肿瘤细胞中的特异性共表达,为精准患者筛选提供了分子基础。该策略有望填补上皮样间皮瘤在靶向治疗领域的空白。

 

针对间皮瘤等实体瘤研究,赛业生物提供基于CRISPR/Cas9或ES细胞技术的基因敲除小鼠模型定制服务,涵盖全身性与条件性敲除,适用于肿瘤发生机制研究、药物靶点验证及药效评估。我们拥有成熟的建模平台,支持多种背景品系,助力客户快速获得精准的基因功能研究模型,适用于探索如c-MET、EGFR等靶点在肿瘤微环境中的作用。

 

研究方法与核心实验

研究团队首先通过分析TCGA和Bueno等公共RNA-seq数据集,结合单细胞转录组测序(scRNA-seq)技术,系统评估了EGFR与c-MET在DPM患者样本中的共表达模式。随后,利用免疫组化(IHC)在27例临床标本中验证了蛋白水平的共表达。在体外实验中,采用多株间皮瘤细胞系(如H2373、H2461)和永生化间皮细胞MET-5A,通过流式细胞术和共聚焦显微镜确认amivantamab对肿瘤细胞表面EGFR和c-MET的特异性结合。通过Western blot分析,研究评估了amivantamab对EGF/HGF刺激后EGFR和c-MET磷酸化及下游PI3K/AKT和MAPK/ERK通路的抑制作用。利用pH依赖性荧光探针,实时监测了受体内吞过程。为探究免疫机制,构建了与PBMC或纯化NK细胞的共培养体系,定量评估amivantamab诱导的细胞毒性,并通过ADCC报告基因系统验证FcγR的激活。

在体内研究中,采用免疫缺陷NSG小鼠构建患者来源的异种移植(PDX)模型,并联合植入体外扩增的人源NK细胞,以重建先天免疫效应功能。实验设计包含对照组、NK细胞单药、amivantamab单药及联合组,系统评估肿瘤生长抑制率(TGI)和动物毒性。进一步探索了IL-15超级激动剂N-803与amivantamab的联合疗效,以增强NK细胞活性。

关键结论与观点

  • 转录组和单细胞分析显示EGFR和c-MET在间皮瘤恶性细胞中频繁共表达,且蛋白水平呈显著正相关,支持双靶点策略的生物学合理性。
  • amivantamab能特异性结合间皮瘤细胞表面的EGFR和c-MET,有效阻断配体诱导的受体激活及下游PI3K/AKT和MAPK信号通路,同时促进受体-抗体复合物的内吞降解,实现双重抑制。
  • 在缺乏免疫细胞时,amivantamab对肿瘤细胞无直接杀伤作用;然而,在PBMC或NK细胞存在下,其诱导强烈的ADCC效应,且NK细胞介导的细胞毒性显著强于PBMC,提示NK细胞是主要效应细胞。该发现强调了免疫微环境在amivantamab疗效中的核心地位,为后续实验方向中评估肿瘤浸润NK细胞丰度作为预测生物标志物提供了依据。
  • 在PDX模型中,amivantamab联合人源NK细胞显著抑制肿瘤生长,TGI达89.1%,且未见明显毒性,验证了其在体内的NK细胞依赖性抗肿瘤活性。该结果为推进至临床试验提供了坚实的动物模型证据。
  • 联合IL-15超级激动剂N-803可进一步增强amivantamab的抗肿瘤效果,实现近完全肿瘤抑制,提示细胞因子联合治疗是提升疗效的可行策略,值得在后续实验方向中深入探索其机制与安全性。

研究意义与展望

该研究为间皮瘤的药物开发开辟了新路径,amivantamab作为双特异性抗体,不仅克服了传统TKI单靶点抑制的局限,更通过激活先天免疫系统实现协同杀伤,代表了“靶向+免疫”双功能疗法的典范。其疗效不依赖于PD-L1表达,为上皮样间皮瘤患者提供了潜在的治疗选择。

在临床监测方面,研究提示可通过IHC或RNA-seq检测EGFR和c-MET共表达水平作为患者筛选的生物标志物,同时监测外周血或肿瘤微环境中NK细胞状态,以预测治疗响应。此外,该机制研究支持在临床试验中联合IL-15激动剂等免疫增强剂,以最大化疗效。

在疾病建模领域,本研究建立的PDX-NK细胞人源化模型为评估其他抗体药物的ADCC活性提供了可靠平台,尤其适用于评估靶向c-MET或EGFR的新型治疗剂。该模型可广泛应用于个体化药效评价和联合用药筛选。

 

为支持间皮瘤的免疫治疗研究,赛业生物提供免疫系统人源化小鼠模型,包括PBMC和HSC人源化模型,可在免疫缺陷小鼠体内重建人类免疫系统,适用于评估如amivantamab等抗体药物的体内ADCC活性。该模型特别适合研究NK细胞介导的肿瘤杀伤机制,支持肿瘤免疫疗法的临床前药效评价,为抗体药物开发提供更贴近人体响应的验证平台。

 

结语

本研究系统阐明了amivantamab在间皮瘤中的双重作用机制:通过阻断EGFR和c-MET信号通路抑制肿瘤生长,同时依赖NK细胞介导的ADCC实现免疫清除。这一发现不仅为间皮瘤——尤其是对现有免疫治疗响应不佳的上皮样亚型——提供了强有力的临床前依据,也凸显了双特异性抗体在实体瘤治疗中的独特优势。从实验室到临床,该研究推动了以c-MET和EGFR为靶点的精准免疫治疗策略的发展,建议将amivantamab推进至临床试验,特别是在EGFR/MET共表达的间皮瘤患者中。同时,其建立的PDX-NK人源化模型为后续药物筛选和机制研究提供了重要工具,有望加速新型抗体疗法的转化进程,最终改善这一难治性肿瘤的临床照护体系。

 

文献来源:
Shinichiro Suzuki, Kaushal Parikh, Ezequiel Tolosa, Farhad Kosari, and Aaron S Mansfield. Amivantamab induces immune-mediated cytotoxicity in mesothelioma via EGFR and MET engagement. Journal of thoracic oncology : official publication of the International Association for the Study of Lung Cancer.
抗体人源化
单克隆抗体治疗通常来源于非人类(通常是小鼠),因此可能在人体内引发免疫反应。抗体人源化旨在改造抗体可变区序列,以获得不引起免疫反应的抗体。我们利用OAS数据库中近10亿个抗体序列,建立了抗体人源化评估模型,能够区分人类和非人类抗体的可变区序列。模型输出的分数与现有FDA抗体治疗的实验性免疫原性(ADA)呈负相关。参考,我们结合该模型与集束搜索算法,开发了一种抗体序列人源化改造工具。该工具旨在通过最少的突变,在尽可能保持亲和力等关键特性的同时,最大程度地提高抗体的人源化水平,从而降低其免疫原性。